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Micron Document

<!DOCTYPE html>

<title>Nährmedium</title>

</head>

<h1 id="firstHeading" class="firstHeading mw-first-heading"><span class="mw-page-title-main">Nährmedium</span></h1>

</header>

</div>

<p>Ein <b>Nährmedium</b>, auch als <b>Kulturmedium</b> bezeichnet, dient zur <a href="Kultivierung" title="Kultivierung">Kultivierung</a> von <a href="Mikroorganismen" class="mw-redirect" title="Mikroorganismen">Mikroorganismen</a>, <a href="Zelle_(Biologie)" title="Zelle (Biologie)">Zellen</a>, <a href="Gewebe_(Biologie)" title="Gewebe (Biologie)">Geweben</a> oder kleinen Pflanzen, wie dem <a href="Laubmoose" title="Laubmoose">Laubmoos</a> <i><a href="Physcomitrella_patens" class="mw-redirect" title="Physcomitrella patens">Physcomitrella patens</a></i>.<sup id="cite_ref-plant_1-0" class="reference"><a href="#cite_note-plant-1"><span class="cite-bracket">[</span>1<span class="cite-bracket">]</span></a></sup> Man unterscheidet zwischen flüssigen (zum Beispiel Bouillon, Nährbouillon oder <b>Nährlösung</b>) und gelierten („festen“) Nährmedien (<b>Nährböden</b>).

</p>

<div class="mw-heading mw-heading2"><h2 id="Anwendung">Anwendung</h2></div>

<div class="mw-heading mw-heading3"><h3 id="Flüssige_Nährmedien"><span id="Fl.C3.BCssige_N.C3.A4hrmedien"></span>Flüssige Nährmedien</h3></div>

<p>Flüssige Nährmedien werden eingesetzt

</p>

<ul><li>für biotechnologische Produktionsverfahren (siehe <a href="Bioreaktor" title="Bioreaktor">Bioreaktor</a>)</li>

<li><a href="Zellkulturmedium" title="Zellkulturmedium">Zellkulturmedien</a> zur Kultivierung von <a href="Zelle_(Biologie)#Die_eukaryotische_Zelle" title="Zelle (Biologie)">eukaryotischen Zellen</a> (z. B. <a href="DMEM" class="mw-redirect" title="DMEM">DMEM</a>, <a href="Eagle%E2%80%99s_Minimal_Essential_Medium" class="mw-redirect" title="Eagle’s Minimal Essential Medium">MEM</a>, <a href="RPMI-1640" title="RPMI-1640">RPMI-1640</a>, Ham’s F-10 und Ham’s F-12) und Mikroorganismen (siehe <a href="Mikroorganismenkultur" title="Mikroorganismenkultur">Mikroorganismenkultur</a>) zu Forschungszwecken</li>

<li>zur Kultivierung von lebenden Geweben für den medizinischen Einsatz (z. B. <a href="Transplantation" title="Transplantation">Hauttransplantationen</a>)</li>

<li>für den Nachweis oder zur Voranreicherung von Mikroorganismen (siehe <a href="Mikroorganismenkultur#Anreicherungskultur" title="Mikroorganismenkultur">Anreicherungskultur</a>)</li>

<li>zur Prüfung auf bestimmte Stoffwechselleistungen von Mikroorganismen zu deren Identifizierung (siehe <a href="Bunte_Reihe_(Labor)" title="Bunte Reihe (Labor)">Bunte Reihe (Labor)</a>)</li>

<li>zur Quantifizierung von Mikroorganismen nach der Methode der „Wahrscheinlichsten Anzahl“ („Most Probable Number“, siehe <a href="MPN-Verfahren" class="mw-redirect" title="MPN-Verfahren">MPN-Verfahren</a>).</li></ul>

<div class="mw-heading mw-heading3"><h3 id="Feste_Nährmedien_(Gelnährmedien)"><span id="Feste_N.C3.A4hrmedien_.28Geln.C3.A4hrmedien.29"></span>Feste Nährmedien (Gelnährmedien)</h3></div>

<p>Als <i>Feste Nährmedien</i> bezeichnet man Nährmedien, die durch Zusatz eines Geliermittels in Form eines Gels vorliegen. Feste Nährmedien werden vor allem zu Analysezwecken verwendet, denn sie ermöglichen auch eine <a href="Keimzahl" class="mw-redirect" title="Keimzahl">Quantifizierung von Mikroorganismen</a>: Da die Mikroorganismen sich nicht frei im Medium verteilen können, bilden sie bei ihrer Vermehrung um jeden auf oder im Nährmedium befindlichen Mikroorganismus eine sichtbare <a href="Kolonie_(Biologie)" title="Kolonie (Biologie)">Kolonie</a>. Die Anzahl dieser Kolonien entspräche also im Idealfall der ursprünglichen Anzahl von Mikroorganismen. Da jedoch eine Kolonie auch von mehreren dicht beieinander liegenden Individuen gebildet werden kann, entspricht die Anzahl der Kolonien nicht der tatsächlichen Anzahl der Mikroorganismen, sondern nur der Anzahl der Individuen und der in Gruppen im oder auf dem Nährboden verteilten Mikroorganismen. Diese Individuen und Individuengruppen bezeichnet man als <a href="Koloniebildende_Einheit" title="Koloniebildende Einheit">KbE</a> (<b>K</b>olonie<b>b</b>ildende <b>E</b>inheit, auch cfu – <b>c</b>olony <b>f</b>orming <b>u</b>nits).<sup id="cite_ref-bast_2-0" class="reference"><a href="#cite_note-bast-2"><span class="cite-bracket">[</span>2<span class="cite-bracket">]</span></a></sup>

</p><p>Weiterhin werden feste Nährmedien verwendet, wenn die sich auf der Oberfläche des Nährmediumgels bildenden Kolonien mit charakteristischem Aussehen zur Charakterisierung und Identifizierung der Mikroorganismen herangezogen werden sollen.

</p>

<div class="mw-heading mw-heading3"><h3 id="Halbfeste_Nährmedien"><span id="Halbfeste_N.C3.A4hrmedien"></span>Halbfeste Nährmedien</h3></div>

<p>Halbfeste Nährmedien werden vor allem in hoher Schicht in <a href="Reagenzglas" title="Reagenzglas">Reagenzröhrchen</a>, als „Hochschichtröhrchen“ bezeichnet, verwendet. Dieser sogenannte „Weichagar“ enthält <a href="Agar-Agar" class="mw-redirect" title="Agar-Agar">Agar-Agar</a> in geringerer Konzentration als bei einem festeren Nährmedium üblich. Mit ihm kann man bei vielen Mikroorganismen die durch <a href="Flagellen" class="mw-redirect" title="Flagellen">Flagellen</a> bewirkte aktive Bewegung (<a href="Motilit%C3%A4t" title="Motilität">Motilität</a>) nachweisen. Außerdem wird er zur Schaffung eines <a href="Stoffgradient" class="mw-redirect" title="Stoffgradient">Sauerstoffgradienten</a> verwendet, um <a href="Mikroaerophil" title="Mikroaerophil">mikroaerophile</a> Organismen zu kultivieren, diese benötigen eine geringere <a href="Sauerstoff" title="Sauerstoff">Sauerstoffkonzentration</a> als die, welche sich im Lösungsgleichgewicht mit der Luft einstellt.<sup id="cite_ref-bast_2-1" class="reference"><a href="#cite_note-bast-2"><span class="cite-bracket">[</span>2<span class="cite-bracket">]</span></a></sup>

</p>

<div class="mw-heading mw-heading2"><h2 id="Zusammensetzung">Zusammensetzung</h2></div>

<p>Die Grundzusammensetzung eines Nährmediums besteht meist aus einem Hauptanteil <a href="Wasser" title="Wasser">Wasser</a>, einer für den jeweiligen Organismus verwertbaren Energiequelle (siehe <a href="Chemotrophie" title="Chemotrophie">Chemotrophie</a>), beispielsweise <a href="Organische_Verbindungen" class="mw-redirect" title="Organische Verbindungen">organische Verbindungen</a> oder <a href="Schwefel" title="Schwefel">schwefelhaltige</a> Verbindungen, sowie von ihm benötigte <a href="N%C3%A4hrstoff" title="Nährstoff">Nährstoffe</a> (organische oder anorganische <a href="Kohlenstoff" title="Kohlenstoff">Kohlenstoff</a>-, <a href="Stickstoff" title="Stickstoff">Stickstoff</a>-, Schwefel- und <a href="Phosphat" class="mw-redirect" title="Phosphat">Phosphat</a>-Quellen sowie andere essentielle Nährstoffe). Die Nährstoffe werden auch Substrate genannt und sind in den Nährmedien für <a href="Heterotrophie" title="Heterotrophie">Heterotrophe</a> meistens <a href="Kohlenhydrate" title="Kohlenhydrate">Kohlenhydrate</a> („Zucker“, etwa Traubenzucker wie bei den Serumnährböden der <a href="Friedrich_Loeffler_(Mediziner%2C_1852)" title="Friedrich Loeffler (Mediziner, 1852)">Loeffler</a>-Platte), Proteinhydrolysate (<a href="Pepton" title="Pepton">Peptone</a>) und gegebenenfalls <a href="Fetts%C3%A4uren" title="Fettsäuren">Fettsäuren</a>. Zusätzlich liefern anorganische <a href="Salze" title="Salze">Salze</a> dem Organismus lebenswichtige Ionen, wie z. B. <a href="Ammonium" title="Ammonium">Ammonium</a>, <a href="Kalium" title="Kalium">Kalium</a>, <a href="Natrium" title="Natrium">Natrium</a>, Phosphat, <a href="Sulfat" class="mw-redirect" title="Sulfat">Sulfat</a> sowie <a href="Spurenelement" title="Spurenelement">Spurenelemente</a>.<sup id="cite_ref-bast_2-2" class="reference"><a href="#cite_note-bast-2"><span class="cite-bracket">[</span>2<span class="cite-bracket">]</span></a></sup>

</p><p>Daneben können noch enthalten sein:<sup id="cite_ref-bast_2-3" class="reference"><a href="#cite_note-bast-2"><span class="cite-bracket">[</span>2<span class="cite-bracket">]</span></a></sup>

</p>

<ul><li>Farbstoffe bzw. deren Vorstufen (Mikroskopiefarbstoffe, chromogene Substrate)</li>

<li><a href="Geliermittel" title="Geliermittel">Geliermittel</a> (Verfestigungsmittel), wie <a href="Agar-Agar" class="mw-redirect" title="Agar-Agar">Agar-Agar</a> oder (seltener) <a href="Gelatine" title="Gelatine">Gelatine</a>,</li>

<li><a href="Inhibitor#Hemmstoff_(Mikrobiologie)" title="Inhibitor">Hemmstoffe</a> (zum Beispiel <a href="Antibiotika" class="mw-redirect" title="Antibiotika">Antibiotika</a>) und selektive Agentien, um das Wachstum unerwünschter Mikroorganismen zu verhindern (z. B. <a href="Chloramphenicol" title="Chloramphenicol">Chloramphenicol</a> für <a href="Hefen" title="Hefen">Hefen</a>/<a href="Schimmelpilz" class="mw-redirect" title="Schimmelpilz">Schimmel</a>-Nährböden)</li>

<li><a href="Indikator_(Chemie)" title="Indikator (Chemie)">Indikatoren</a>, um Änderungen anzuzeigen, wie z. B. beim <a href="PH-Wert" title="PH-Wert">pH-Wert</a>, aber auch um gewisse Stoffwechselprodukte oder Stoffwechselaktivitäten anzuzeigen</li>

<li><a href="Pufferl%C3%B6sung" class="mw-redirect" title="Pufferlösung">Puffersubstanzen</a>, um den <a href="PH-Wert" title="PH-Wert">pH-Wert</a> zu stabilisieren</li>

<li>Wachstumsfaktoren (<a href="Supplin" title="Supplin">Suppline</a> genannt), wie Hormone, Vitamine und dergleichen.</li></ul>

<p>Zur Herstellung eines Nährmediums werden die Nähr- und Zusatzstoffe gemäß einer <a href="Rezeptur" title="Rezeptur">Rezeptur</a> zusammengemischt und in <a href="Demineralisiertes_Wasser" title="Demineralisiertes Wasser">destilliertem oder demineralisiertem Wasser</a> (erforderlichenfalls unter Erhitzen mit heißem, strömendem Wasserdampf) gelöst. Anschließend erfolgt die <a href="Sterilisierung" class="mw-redirect" title="Sterilisierung">Sterilisierung</a> (meist durch Erhitzen im <a href="Autoklav" title="Autoklav">Autoklaven</a>). Thermolabile Zusatzstoffe, die durch die Hitzesterilisierung zerstört würden, werden auf mechanischem Weg sterilisiert – meistens durch eine <a href="Sterilisation#Sterilfiltration" title="Sterilisation">Sterilfiltration</a> mit einem

Membranfilter (Sterilfilter) – und dem Nährmedium erst nach dessen Hitzesterilisierung und Erkalten zugegeben.<sup id="cite_ref-süßmuth_3-0" class="reference"><a href="#cite_note-süßmuth-3"><span class="cite-bracket">[</span>3<span class="cite-bracket">]</span></a></sup>

</p><p>Feste Nährmedien enthalten mindestens 1 % Agar-Agar, je nach Rezeptur variiert die Konzentration zwischen 10 und 20 g Agar/l Nährmedium (<a href="Gramm" title="Gramm">Gramm</a> pro <a href="Liter" title="Liter">Liter</a>). Für einen sogenannten „Weichagar“ sind 1–4 g/l üblich. Historisch bedingt spricht man bei wässrigen Lösungen komplexer, organischer Substrate von <a href="Br%C3%BChe" title="Brühe">Bouillon</a>, da die ersten Nährmedien dieser Art noch in Anlehnung an Suppenrezepte hergestellt wurden. Solche Flüssigmedien ähneln in der Zusammensetzung den festen Nährmedien, nur ist bei ihnen kein Agar oder ein anderes Geliermittel enthalten.<sup id="cite_ref-bast_2-4" class="reference"><a href="#cite_note-bast-2"><span class="cite-bracket">[</span>2<span class="cite-bracket">]</span></a></sup>

</p>

<div class="mw-heading mw-heading2"><h2 id="Einteilung">Einteilung</h2></div>

<p>Kulturmedien lassen sich nach verschiedenen Gesichtspunkten einteilen:<sup id="cite_ref-bast_2-5" class="reference"><a href="#cite_note-bast-2"><span class="cite-bracket">[</span>2<span class="cite-bracket">]</span></a></sup><sup id="cite_ref-süßmuth_3-1" class="reference"><a href="#cite_note-süßmuth-3"><span class="cite-bracket">[</span>3<span class="cite-bracket">]</span></a></sup>

</p>

<div class="mw-heading mw-heading3"><h3 id="Nach_Anwendungsgebiet">Nach Anwendungsgebiet</h3></div>

<th style="width:10%">Bezeichnung</th>

<th style="width:45%">Festmedium</th>

<th style="width:45%">Flüssigmedium

</th></tr>

<tr>

<td>Enthält</td>

<td>meistens Agar als Geliermittel</td>

<td>kein Geliermittel

</td></tr>

<tr>

<td>Anwendung</td>

<td>Bei Festmedien steht die Isolierung und Analyse der jeweiligen Mikroorganismen im Vordergrund, daher werden sie auch als Isolierungsmedien bezeichnet. Bei der Quantifizierung von Mikroorganismen verwendet man feste Medien zur Bestimmung der <a href="Keimzahl" class="mw-redirect" title="Keimzahl">Koloniezahl</a>.</td>

<td>Flüssigmedien werden als Anreicherungsmedium verwendet. Ebenso werden sie genutzt, wenn man größere Mengen einer Kultur benötigt. Bei der Quantifizierung von Mikroorganismen verwendet man flüssige Medien im <a href="Titerverfahren" class="mw-redirect" title="Titerverfahren">Titerverfahren</a>.

</td></tr></tbody></table>

<div class="mw-heading mw-heading3"><h3 id="Nach_Inhaltsstoffen">Nach Inhaltsstoffen</h3></div>

<th style="width:10%">Bezeichnung</th>

<th style="width:45%">synthetisches Medium</th>

<th style="width:45%">komplexes Medium

</th></tr>

<tr>

<td>Erklärung</td>

<td>Sie enthalten definierte Konzentrationen von chemisch exakt definierten Inhaltsstoffen.</td>

<td>Hier sind (auch) komplexe, organische Bestandteile enthalten, die chemisch nicht genau bestimmt sind.

</td></tr>

<tr>

<td>enthält z. B.</td>

<td><small>D</small>-<a href="Glucose" title="Glucose">Glucose</a>, <a href="Ammoniumchlorid" title="Ammoniumchlorid">Ammoniumchlorid</a> (NH<sub>4</sub>Cl), <a href="Magnesiumsulfat" title="Magnesiumsulfat">Magnesiumsulfat</a> (MgSO<sub>4</sub>), <a href="Dikaliumhydrogenphosphat" title="Dikaliumhydrogenphosphat">Dikaliumhydrogenphosphat</a> (K<sub>2</sub>HPO<sub>4</sub>)</td>

<td><a href="Pepton" title="Pepton">Pepton</a>, Caseinhydrolysat, <a href="Hefeextrakt" title="Hefeextrakt">Hefeextrakt</a>, <a href="Fleischextrakt" title="Fleischextrakt">Fleischextrakt</a>, <a href="Blut" title="Blut">Blut</a>

</td></tr>

<tr>

<td>Anwendung</td>

<td>Synthetische Medien dienen insbesondere zur Selektion bestimmter Arten von Mikroorganismen. Aber auch, wenn identische Anfangsbedingungen für Wiederholungsexperimente wichtig sind, werden sie eingesetzt.</td>

<td>Komplexe Medien (auch Komplettmedien genannt) werden am häufigsten verwendet und erlauben das Wachstum fast aller <a href="Heterotrophie" title="Heterotrophie">heterotropher</a> Mikroorganismen.

</td></tr></tbody></table>

<div class="mw-heading mw-heading3"><h3 id="Nach_Nährstoffansprüchen"><span id="Nach_N.C3.A4hrstoffanspr.C3.BCchen"></span>Nach Nährstoffansprüchen</h3></div>

<th style="width:10%">Bezeichnung</th>

<th style="width:45%">Minimalmedium</th>

<th style="width:45%">Vollmedium

</th></tr>

<tr>

<td>Erklärung</td>

<td>Es enthält die absolut notwendigen Nährstoffe für das Wachstum des betreffenden Mikroorganismus („Existenzminimum“), diese sind chemisch definiert.</td>

<td>Es enthält darüber hinausgehende, wachstumsfördernde Stoffe und Suppline.

</td></tr>

<tr>

<td>enthält z. B.</td>

<td><small>D</small>-Glucose als Kohlenstoffquelle, Ammonium-Ionen als Stickstoffquelle, Sulfat-Ionen als Schwefelquelle</td>

<td>Pepton oder mehrere <a href="Aminos%C3%A4uren" title="Aminosäuren">Aminosäuren</a> als Stickstoffquelle, schwefelhaltige Aminosäuren als Schwefelquelle

</td></tr>

<tr>

<td>Anwendung</td>

<td>Die Zusammensetzung eines Minimalmediums muss <a href="Empirisch" class="mw-redirect" title="Empirisch">empirisch</a> ermittelt werden oder bekannt sein, es dient also der Selektion und Beschreibung eines bestimmten Mikroorganismus.</td>

<td>Wegen der enthaltenen wachstumsfördernden Bestandteile ist ein Vollmedium zur Kultivierung zahlreicher Mikroorganismen geeignet. Ein komplexes Medium ist gleichzeitig ein Vollmedium.

</td></tr></tbody></table>

<div class="mw-heading mw-heading3"><h3 id="Nach_Arbeitsaufwand">Nach Arbeitsaufwand</h3></div>

<th style="width:10%">Bezeichnung</th>

<th style="width:45%">Fertige Mischung</th>

<th style="width:45%">Fertigmedium

</th></tr>

<tr>

<td>Erklärung</td>

<td>Bei häufig verwendeten Nährmedien werden die festen Bestandteile samt Geliermittel industriell zusammengestellt, um zu erreichen, dass die Zusammensetzung immer einheitlich gleich bleibt. Derartige Fertigmischungen liegen als Pulver, <a href="Granulare_Materie" title="Granulare Materie">Granulat</a>, <a href="Tablette" title="Tablette">Tabletten</a> oder <a href="Lyophilisat" class="mw-redirect" title="Lyophilisat">Lyophilisat</a> vor.</td>

<td>Beim Fertigmedium ist das Medium bereits industriell hergestellt und in Petrischalen oder Röhrchen abgefüllt worden.

</td></tr>

<tr>

<td>Anwendung</td>

<td>Diese vorgefertigten Mischungen müssen bei Bedarf nur noch in erhitztem Wasser gelöst und <a href="Sterilisation" title="Sterilisation">sterilisiert</a> werden.</td>

<td>Das Fertigmedium kann ohne weitere Vorbereitung direkt eingesetzt werden.

</td></tr></tbody></table>

<div class="mw-heading mw-heading3"><h3 id="Nach_Untersuchungsziel">Nach Untersuchungsziel</h3></div>

<p>Man verwendet Medien auch, um Mikroorganismen anhand bestimmter Eigenschaften zu selektieren. Dafür gibt es zwei Ansätze:<sup id="cite_ref-süßmuth_3-2" class="reference"><a href="#cite_note-süßmuth-3"><span class="cite-bracket">[</span>3<span class="cite-bracket">]</span></a></sup>

</p>

<div class="mw-heading mw-heading4"><h4 id="Selektivmedien">Selektivmedien</h4></div>

<p><a href="Selektivmedium" class="mw-redirect" title="Selektivmedium">Selektivmedien</a> erlauben nur das Wachstum von bestimmten Mikroorganismen, die besondere Eigenschaften aufweisen, um sich in diesem Medium zu vermehren. Ein Beispiel sind Medien, die mit <a href="Antibiotika" class="mw-redirect" title="Antibiotika">Antibiotika</a> angereichert sind. In ihnen können nur solche Mikroorganismen wachsen, die gegen das verwendete Antibiotikum <a href="Resistent" class="mw-redirect" title="Resistent">resistent</a> sind.

</p>

<div class="mw-heading mw-heading4"><h4 id="Differentialmedien">Differentialmedien</h4></div>

<p>Differentialmedien (auch Differenzierungsmedien oder Indikatornährböden genannt) erlauben das Wachstum von mehreren eingesetzten Mikroorganismen. Sie sind jedoch so zusammengesetzt, dass sich die entstehenden Kolonien der verschiedenen Mikroorganismen im Aussehen voneinander unterscheiden, so lassen sie sich differenzieren. Beispielsweise können auf <a href="Blutagar" title="Blutagar">Blutagar</a> Bakterienstämme, die zur <a href="H%C3%A4molyse" title="Hämolyse">Hämolyse</a> fähig sind, von anderen durch den Klärungshof um ihre Kolonien unterschieden werden (Eine klare Trennung verschiedener Bakterienarten auf Nährboden war 1876 <a href="Ferdinand_Julius_Cohn" title="Ferdinand Julius Cohn">Ferdinand Julius Cohn</a> gelungen<sup id="cite_ref-4" class="reference"><a href="#cite_note-4"><span class="cite-bracket">[</span>4<span class="cite-bracket">]</span></a></sup>).

</p><p>Häufig enthalten Differentialmedien Farbstoffe oder <a href="PH-Indikator" class="mw-redirect" title="PH-Indikator">pH-Indikatoren</a>, mit denen man bestimmte Stoffwechselleistungen der Mikroorganismen sichtbar machen kann. Beispiele dafür sind der Abbau eines Kohlenhydrats durch Mikroorganismen unter Säurebildung, dabei wird der pH-Wert erniedrigt (<a href="S%C3%A4uren" title="Säuren">sauer</a>), oder der Abbau von Harnstoff oder Citrat durch Bakterien; dabei entstehen <a href="Base_(Chemie)" class="mw-redirect" title="Base (Chemie)">alkalische</a> Abbauprodukte und der pH-Wert wird erhöht. Die Änderung des pH-Wertes wird mit Hilfe eines passenden pH-Indikators durch Farbumschlag angezeigt; dies führt zu einer Verfärbung des Mediums oder der Kolonien.

</p><p>Ein bekanntes Medium, das beide dieser Prinzipien vereint, ist der <a href="MacConkey-Agar" title="MacConkey-Agar">MacConkey-Agar</a>. Er enthält <a href="Gallensalze" class="mw-redirect" title="Gallensalze">Gallensalze</a> und <a href="Kristallviolett" title="Kristallviolett">Kristallviolett</a> und verhindert dadurch das Wachstum von <a href="Gramf%C3%A4rbung" class="mw-redirect" title="Gramfärbung">grampositiven</a> Bakterien und wirkt so als Selektivmedium. Für seine Wirkung als Differentialmedium ist <a href="Lactose" title="Lactose">Lactose</a> und <a href="Neutralrot" title="Neutralrot">Neutralrot</a> enthalten, so dass Lactose-fermentierende Bakterien anhand eines Farbumschlages des pH-Indikators Neutralrot identifiziert werden können. Ein weiteres häufig verwendetes Kulturmedium, das sowohl als Selektivmedium wie auch als Differentialmedium wirkt, ist der <a href="XLD-Agar" title="XLD-Agar">XLD-Agar</a>.

</p>

<div class="mw-heading mw-heading2"><h2 id="Replica_Plating">Replica Plating</h2></div>

<div class="hauptartikel" role="navigation"><span class="hauptartikel-pfeil" title="siehe" aria-hidden="true" role="presentation">→ </span><i><span class="hauptartikel-text">Hauptartikel</span>: <a href="Stempeltechnik_(Mikrobiologie)" title="Stempeltechnik (Mikrobiologie)">Stempeltechnik (Mikrobiologie)</a></i></div>

<p><i><span lang="en">Replica Plating</span></i> (zu deutsch etwa <i>Replikationsausplattierung</i>) bezeichnet den Transfer aller Kolonien von einem festen Nährmedium zu einem anderen festen Nährmedium unter Erhalt der Anordnung der einzelnen Kolonien zueinander.<sup id="cite_ref-PMID14927572_5-0" class="reference"><a href="#cite_note-PMID14927572-5"><span class="cite-bracket">[</span>5<span class="cite-bracket">]</span></a></sup> Auf einen <i>Lederberg-Stempel</i> wird hierzu ein steriles <a href="Samt" title="Samt">Samttuch</a> gespannt, das zuerst auf eine mit Kolonien bewachsene Platte und anschließend auf eine unbewachsene Platte durch sanftes Aufdrücken übertragen wird. Durch den Abdruck entsteht eine Kopie der Kolonien auf dem festen Nährmedium, die zum Heranwachsen der Kolonien kultiviert wird. Die Florfasern des Samtes vermeiden ein Verschmieren der Kolonien. Vor der Verwendung von Samt wurde der Transfer von Kolonien mit sterilen Zahnstochern (nach E. Tatum) oder mit sterilem <a href="Filterpapier" title="Filterpapier">Filterpapier</a> (nach N. Visconti) durchgeführt.

</p>

<div class="mw-heading mw-heading2"><h2 id="Siehe_auch">Siehe auch</h2></div>

<ul><li><a href="Hydrokulturd%C3%BCnger" title="Hydrokulturdünger">Hydrokulturdünger</a></li></ul>

<div class="mw-heading mw-heading2"><h2 id="Weblinks">Weblinks</h2></div>

<div class="sisterproject" style="margin:0.1em 0 0 0;"><div class="noresize noviewer" style="display:inline-block; line-height:10px; min-width:1.6em; text-align:center;" aria-hidden="true" role="presentation"><span class="mw-default-size" typeof="mw:File"><span title="Commons"></span></span></div><b><span class=""><a class="external text" href="https://commons.wikimedia.org/wiki/Category:Petri_dishes_cultures?uselang=de"><span lang="en">Commons</span>: Kulturen in Petrischalen</a></span></b> – Sammlung von Bildern, Videos und Audiodateien</div>

<div class="sisterproject" style="margin:0.1em 0 0 0;"><span class="noviewer" style="display:inline-block; line-height:10px; min-width:1.6em; text-align:center;" aria-hidden="true" role="presentation"><span class="mw-default-size" typeof="mw:File"><span title="Wiktionary"></span></span></span><b><a href="https://de.wiktionary.org/wiki/N%C3%A4hrboden" class="extiw external" title="wikt:Nährboden">Wiktionary: Nährboden</a></b> – Bedeutungserklärungen, Wortherkunft, Synonyme, Übersetzungen</div>

<ul><li><span class="cite"><a rel="nofollow" class="external text" href="https://www.fda.gov/food/laboratory-methods-food/media-index-bam"><i>Media Index for BAM (Liste von Nährmedien im Bacteriological Analytical Manual).</i></a> In: <i>Website der U.S. Food and Drug Administration (FDA).</i> 16. März 2013,<span class="Abrufdatum"> abgerufen am 2. April 2013</span>.</span><span style="display: none;" class="Z3988" title="ctx_ver=Z39.88-2004&rft_val_fmt=info%3Aofi%2Ffmt%3Akev%3Amtx%3Adc&rfr_id=info%3Asid%2Fde.wikipedia.org%3AN%C3%A4hrmedium&rft.title=Media+Index+for+BAM+%28Liste+von+N%C3%A4hrmedien+im+Bacteriological+Analytical+Manual%29&rft.description=Media+Index+for+BAM+%28Liste+von+N%C3%A4hrmedien+im+Bacteriological+Analytical+Manual%29&rft.identifier=https%3A%2F%2Fwww.fda.gov%2Ffood%2Flaboratory-methods-food%2Fmedia-index-bam&rft.date=2013-03-16"> </span></li></ul>

<div class="mw-heading mw-heading2"><h2 id="Einzelnachweise">Einzelnachweise</h2></div>

Birgit Hadeler, Sirkka Scholz, <a href="Ralf_Reski" title="Ralf Reski">Ralf Reski</a> (1995) Gelrite and agar differently influence <a href="Cytokinin" class="mw-redirect" title="Cytokinin">cytokinin</a>-sensitivity of a moss. Journal of Plant Physiology 146, 369–371.</span>

</li>

Eckhard Bast: <cite style="font-style:italic">Mikrobiologische Methoden: Eine Einführung in grundlegende Arbeitstechniken</cite>. 2. Auflage. Spektrum Akademischer Verlag GmbH, Heidelberg/Berlin 2001, ISBN 978-3-8274-1072-6.<span class="Z3988" title="ctx_ver=Z39.88-2004&rft_val_fmt=info%3Aofi%2Ffmt%3Akev%3Amtx%3Abook&rfr_id=info:sid/de.wikipedia.org:N%C3%A4hrmedium&rft.au=Eckhard+Bast&rft.btitle=Mikrobiologische+Methoden%3A+Eine+Einf%C3%BChrung+in+grundlegende+Arbeitstechniken&rft.date=2001&rft.edition=2.&rft.genre=book&rft.isbn=9783827410726&rft.place=Heidelberg%2FBerlin&rft.pub=Spektrum+Akademischer+Verlag+GmbH" style="display:none"> </span></span>

</li>

Roland Süßmuth, Jürgen Eberspächer, Rainer Haag, Wolfgang Springer: <cite style="font-style:italic">Biochemisch-mikrobiologisches Praktikum</cite>. 1. Auflage. Thieme Verlag, Stuttgart/New York 1987, ISBN 3-13-685901-4, <span style="white-space:nowrap">S.<span style="display:inline-block;width:.2em"> </span>12–15</span>.<span class="Z3988" title="ctx_ver=Z39.88-2004&rft_val_fmt=info%3Aofi%2Ffmt%3Akev%3Amtx%3Abook&rfr_id=info:sid/de.wikipedia.org:N%C3%A4hrmedium&rft.au=Roland+S%C3%BC%C3%9Fmuth%2C+J%C3%BCrgen+Ebersp%C3%A4cher%2C+Rainer+Haag%2C+...&rft.btitle=Biochemisch-mikrobiologisches+Praktikum&rft.date=1987&rft.edition=1.&rft.genre=book&rft.isbn=3136859014&rft.pages=12-15&rft.place=Stuttgart%2FNew+York&rft.pub=Thieme+Verlag" style="display:none"> </span></span>

</li>

<li id="cite_note-4"><span class="mw-cite-backlink"><a href="#cite_ref-4">↑</a></span> <span class="reference-text"><a href="Paul_Diepgen" title="Paul Diepgen">Paul Diepgen</a>, <a href="Heinz_Goerke" title="Heinz Goerke">Heinz Goerke</a>: <i><a href="Ludwig_Aschoff" title="Ludwig Aschoff">Aschoff</a>: Kurze Übersichtstabelle zur Geschichte der Medizin.</i> 7., neubearbeitete Auflage. Springer, Berlin/Göttingen/Heidelberg 1960, S. 42.</span>

</li>

<a href="Joshua_Lederberg" title="Joshua Lederberg">J. Lederberg</a>, E. M. Lederberg: <i>Replica plating and indirect selection of bacterial mutants.</i> In: <i>J Bacteriol.</i> (1952), Band 63(3), S. 399–406. <a class="external mw-magiclink-pmid" rel="nofollow" href="https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/14927572?dopt=Abstract">PMID 14927572</a>; <a rel="nofollow" class="external text" href="https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pmc/articles/PMC169282/">PMC 169282</a> (freier Volltext).</span>

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